Schädlings-Lexikon Cannabis

Symptome

• Punktförmige Aufhellungen auf oberen Blattflächen
• Feine Gespinste an Blattunterseiten und Triebspitzen
• Schneller Vitalitätsverlust bei hoher Temperatur

Monitoring

• Wöchentlich 60x-Lupe an Blattunterseiten
• Frühwarnkarten nahe Umluft und typischen Wärmeinseln
• Befallskarte je Zone dokumentieren

Prävention

• Klimaschwankungen vermeiden (zu heiß/trocken)
• Neue Pflanzen 10-14 Tage quarantänisieren
• Regelmäßige Blattunterseiten-Checks

Biologische Maßnahmen

• Raubmilben (Phytoseiulus persimilis) früh ausbringen
• Kaliseife- oder Pflanzenölpräparate im Intervall
• Befallene Fächerblätter selektiv entfernen

Integrierte Strategie

• Blockweise Zonenbehandlung statt Einzelpflanzen
• Sprühfolge 2-3 Zyklen im Abstand von 3-5 Tagen
• Nachbehandlung mit Nützlingsaufbau stabilisieren

Symptome

• Silbrige Schabspuren entlang Blattadern
• Kleine schwarze Kotpunkte auf Blattunterseiten
• Verkrüppeltes Neuwachstum bei starkem Befall

Monitoring

• Blaue Leimtafeln in Kronenhöhe
• Zweimal pro Woche Blattunterseiten prüfen
• Befallsschwerpunkte an Einlass und Laufwegen kontrollieren

Prävention

• Saubere Kleidung/Tools zwischen Zonen
• Netz- und Schleusenhygiene am Eingang
• Luftbewegung ohne direkte Trockenstress-Zonen

Biologische Maßnahmen

• Raubmilben (Amblyseius swirskii, cucumeris)
• Nematoden gegen Puppenstadien im Substrat
• Milde Kontaktmittel in Rotationsstrategie

Integrierte Strategie

• Befallsdruck über 2 Lebenszyklen durchbrechen
• Kombination aus Blatt- und Substratmaßnahmen
• Nachkontrolle 7 und 14 Tage nach Erstbehandlung

Symptome

• Koloniebildung an Triebspitzen und Blattstielen
• Klebriger Honigtau auf Blättern
• Gekräuselte junge Blätter

Monitoring

• Visuelle Triebspitzen-Kontrolle
• Ameisenaktivität als indirekten Hinweis werten
• Honigtau-Belag dokumentieren

Prävention

• Lückenlose Hygiene im Mutterpflanzenbereich
• Stickstoffüberschuss vermeiden
• Frischmaterial nur nach Quarantäne integrieren

Biologische Maßnahmen

• Florfliegenlarven und Marienkäfer einsetzen
• Kaliseife lokal auf Kolonien
• Befallene Triebteile rückschneiden

Integrierte Strategie

• Nützlingsbesatz über 2-3 Wochen stabil halten
• Nachbehandlung auf versteckte Kolonien
• Honigtauflächen reinigen

Symptome

• Flugschwarm bei Berührung der Pflanze
• Larvenplatten auf Blattunterseiten
• Rußtau-Risiko durch Honigtau

Monitoring

• Gelbtafeln in Vegetations- und Blütezone
• Larvenstadien unter Lupe unterscheiden
• Befallsklassen pro Tisch erfassen

Prävention

• Einlasshygiene und Insektenschutznetze
• Befallsfreie Jungpflanzen sicherstellen
• Dichte Luftzirkulation im Kronendach

Biologische Maßnahmen

• Encarsia formosa parasitische Wespen
• Milde Öle/Seifen in Blattunterseitenrichtung
• Häufige mechanische Blattreduktion

Integrierte Strategie

• Kombination aus Nützlingen und Leimtafeln
• Intervallbehandlungen auf Eier/Larven abstimmen
• Honigtau-Management gegen Sekundärpilze

Symptome

• Weiße, watteartige Nester an Knoten und Blattstielen
• Klebrige Beläge (Honigtau) auf Blättern
• Wachstumsdepression und verkrümmte Triebspitzen

Monitoring

• Blattachseln und Stammnahe Zonen mit Lupe prüfen
• Klebrige Befallsschwerpunkte je Pflanze markieren
• Ameisenaktivität als Indikator dokumentieren

Prävention

• Quarantäne für neue Pflanzen und Stecklinge
• Regelmäßige Hygiene in schwer einsehbaren Knoten
• Überdüngung und Stressspitzen vermeiden

Biologische Maßnahmen

• Lokales Entfernen starker Kolonien
• Kaliseife oder geeignete Ölpräparate punktuell
• Nützlinge wie Cryptolaemus bei frühem Befall

Integrierte Strategie

• Befallsherde zonenweise behandeln
• Wiederholung im 5-7-Tage-Intervall
• Nachkontrolle über mindestens 3 Wochen

Symptome

• Feine, helle Punktierungen auf Blattoberseiten
• Unruhige, springende Insekten bei Berührung
• Uneinheitliches Blattbild in Hotspot-Zonen

Monitoring

• Gelbtafeln in Kronenhöhe
• Ränder und Eintragszonen engmaschig prüfen
• Symptomkarten je Reihe führen

Prävention

• Eintragsmanagement über Schleusen/Netze
• Unkrautdruck um Kulturflächen reduzieren
• Luftführung ohne Stresszonen optimieren

Biologische Maßnahmen

• Frühzeitige mechanische Reduktion lokaler Befallsschwerpunkte
• Biologische Kontaktmaßnahmen in Rotation
• Nützlingsfenster stabil halten

Integrierte Strategie

• Intervallbehandlung nach Populationsdruck
• Befallsquellen außerhalb der Kultur beseitigen
• Nachkontrolle nach 7 und 14 Tagen

Symptome

• Kleine schwarze Flieger über dem Substrat
• Langsames Wachstum bei Jungpflanzen
• Feine Wurzelverletzungen und Staunässespuren

Monitoring

• Gelbtafeln auf Topfkante
• Substratoberfläche auf Larven prüfen
• Bewässerungsfrequenz protokollieren

Prävention

• Substratoberfläche antrocknen lassen
• Keine dauerhafte Staunässe
• Töpfe und Drains regelmäßig reinigen

Biologische Maßnahmen

• Nematoden (Steinernema feltiae)
• BTI-Produkte im Gießwasser
• Sand-/Mineraldeckschicht auf Substrat

Integrierte Strategie

• Gießregime korrigieren + Nematoden
• Leimtafeln zur adulten Reduktion
• Substratwechsel bei massivem Dauerdruck

Symptome

• Mangelbild trotz korrekter Düngung
• Schwacher Wurzelballen, geringes Wurzelweiß
• Kein Erholungseffekt nach Fütterungsanpassung

Monitoring

• Wurzelkontrolle bei Verdachtsfällen
• Substrat-/Drain-Proben mikroskopisch prüfen
• Vergleich vitaler vs. schwacher Pflanzen

Prävention

• Sauberes, geprüftes Substrat verwenden
• Mutterraum und Propagation strikt trennen
• Keine unkontrollierten Pflanzentransfers

Biologische Maßnahmen

• Nematoden und mikrobielles Wurzelmanagement
• Substratreduktion in stark betroffenen Bereichen
• Wurzeldruck durch Klima stabilisieren

Integrierte Strategie

• Befallene Chargen isolieren
• Systematische Sanierung der Bewässerungslinien
• Nachsorge mit engmaschigem Root-Monitoring

Symptome

• Große Fraßlöcher in Blättern
• Kotkrümel in Blütenständen
• Lokaler Blütentod durch Einbohren

Monitoring

• Tägliche Blütenkontrolle in Outdoor-Phasen
• Frass und Kot früh markieren
• Nachtkontrolle bei hohem Falterdruck

Prävention

• Insektenschutznetze früh in der Saison
• Lichtfallen außerhalb Anbaufläche
• Regelmäßiges Entlauben dichter Zonen

Biologische Maßnahmen

• Bacillus thuringiensis (BT) zielgerichtet
• Mechanisches Absammeln
• Präventivbehandlung vor kritischer Blüte

Integrierte Strategie

• BT-Programm nach Wetterfenster planen
• Befallene Buds sofort entfernen
• Botrytis-Nachsorge in betroffenen Bereichen

Symptome

• Weiße, serpentinenartige Fraßgänge
• Punktförmige Einstichstellen
• Verringertes Blattflächenwachstum

Monitoring

• Blattkontrolle auf neue Tunnel
• Gelbtafeln gegen adulte Fliegen
• Befallsverlauf pro Zone kartieren

Prävention

• Frühe Entdeckung in Jungpflanzenphase
• Lüftungsöffnungen mit Insektenschutz
• Beschädigte Blätter zeitnah entfernen

Biologische Maßnahmen

• Nützlinge (Diglyphus isaea)
• Lokales Entfernen stark befallener Blätter
• Intervallkontrolle auf Neuschlupf

Integrierte Strategie

• Nützlinge + Hygiene kombiniert einsetzen
• Rotationsprinzip für Kontaktmittel
• Nachkontrolle über mindestens 2 Wochen

Symptome

• Verkrüppelte, glasig-glänzende Triebspitzen (Epinastie)
• Blattränder rollen sich nach unten, werden ledrig und spröde
• Neuwachstum wirkt verdickt, verdreht, ‚aufgeblasen'
• Scheinbar nährstoffbedingte Wachstumsstörung, reagiert nicht auf Düngung
• Blütenansätze verformen sich, ‚popcorn buds' ohne Trichome

Monitoring

• Mikroskop ab 60× an Triebspitzen (Adulte und glänzende Eier auf Blattunterseite)
• Vergleich gesunder vs. verdächtiger Triebe unter gleichen Bedingungen
• Ausschlussdiagnose: Normaler pH/EC, kein Herbizidkontakt → Breitmilbenverdacht

Prävention

• Strikte Quarantäne aller Neuzugänge (min. 14 Tage) mit Mikroskop-Check
• Mutterpflanzen regelmäßig auf Triebspitzenanomalien prüfen
• Klimaführung optimieren: RLF-Schwankungen > 80 % vermeiden

Biologische Maßnahmen

• Raubmilben Amblyseius andersoni oder A. californicus (breites Beutespektrum)
• Neem-Azadirachtin-Präparate nach Herstellervorgabe, 3× im 5-Tage-Intervall
• Kaliseife-Sprühung als Kontaktmittel auf Triebspitzen und junge Blätter

Integrierte Strategie

• Befallene Triebspitzen sofort entfernen und entsorgen (nicht kompostieren)
• Ablufttemperatur kurzzeitig > 33 °C senkt Milbenfertilität (Hitzeschock-Methode)
• 3 Behandlungszyklen im 5-Tage-Abstand, um alle Lebensstadien zu erfassen
• Nachkontrolle unter Mikroskop an Tag 7, 14 und 21 nach letzter Behandlung

Symptome

• Gelblich-bronzene Verfärbung der unteren Blätter (Aufwärtsprogression)
• Blattränder rollen sich nach oben, Blätter wirken glänzend/ölig
• Trichome werden zerstört: Blüten ohne Harz, flache/braune Drüsenköpfe
• Gesamte Pflanze wirkt ‚ausgetrocknet' trotz normaler Bewässerung
• Schwerer Befall: Kompletter Blattverlust von unten nach oben

Monitoring

• 30-60× Handmikroskop: Wurmförmige Milben (4 Beine, kein Spinngewebe) an Blattstielen und Trichombasen
• UV-Taschenlampe: Beschädigte Trichome fluoreszieren anders als gesunde
• Basalblätter monatlich auf Bronzefärbung kontrollieren, besonders in der Blütephase

Prävention

• Quarantäne und Mikroskop-Screening jeder Neupflanze (Stiel und Blattunterseite)
• Separate Kleidung/Handschuhe pro Raum (Milben haften an Textilien)
• Mutterpflanzen-Bestand regelmäßig rotieren und Altstöcke entsorgen

Biologische Maßnahmen

• Schwefelbasierte Kontaktmittel in Vegetationsphase (vor Blüte!), 2× im Wochenintervall
• Neemöl-Sprühung wöchentlich in Veg, Mindestabstand 3 Wochen vor Ernte
• Raubmilben Amblyseius andersoni als Dauerbesatz präventiv

Integrierte Strategie

• Befallene Pflanzen isolieren, befallene untere Blattschichten komplett entlauben
• Sprühen von unten nach oben (Milben wandern aufwärts)
• Befallene Blütenbestände bei starkem Befall nicht erntefähig – Totalverlust vermeiden durch Frühintervention
• Post-Harvest: Raum komplett reinigen, 48h > 35 °C oder Ozon-Behandlung

Symptome

• Braune, ovale, erhabene Krusten an Stängeln und Blattstielen
• Klebrige Honigtau-Flecken unter befallenen Bereichen
• Lokale Wachstumsdepression, Gelbfärbung benachbarter Blätter
• Schwer abkratzbare ‚Punkte' (nicht mit Substratpartikeln verwechseln)

Monitoring

• Stängel und Verzweigungspunkte visuell inspizieren (alle 2 Wochen)
• Honigtau-Streifen auf benachbarten Blättern als Frühindikator
• Leichtes Abkratzen verdächtiger ‚Punkte' → weicher Körper darunter = Schildlaus

Prävention

• Quarantäne-Prüfung an Stängeln bei Neuzugängen
• Regelmäßige Stängelinspektion v.a. an Mutterpflanzen und Langzeitkulturen
• Übermäßige Stickstoffdüngung vermeiden (weichzelliges Gewebe wird bevorzugt)

Biologische Maßnahmen

• Mechanisches Entfernen per Pinzette oder Zahnbürste + Isopropanol (70 %)
• Nützlinge: Marienkäfer (Chilocorus spp.) oder Schlupfwespen (Metaphycus spp.)
• Ölpräparate (Rapsöl 2 %) im Intervall, um Crawler-Stadien zu treffen

Integrierte Strategie

• Starke Herde: Betroffene Triebabschnitte zurückschneiden und entsorgen
• Crawler-Wanderphase abpassen (einziges mobiles Stadium, 1–2× pro Generation)
• Nachkontrolle 14 und 28 Tage nach Behandlung auf Rekolonisation

Symptome

• Kleine weiße/graue Tiere springen bei Substratberührung weg
• Fraßspuren an feinen Wurzelhaaren bei Massenbefall (selten)
• In der Regel keine sichtbaren Pflanzenschäden

Monitoring

• Substratoberfläche beobachten nach Gießen
• Bei Verdacht: Feuchtes Tuch über Substrat legen und nach 24h kontrollieren
• Nicht mit Trauermücken-Larven oder Wurzelläusen verwechseln

Prävention

• Substratfeuchte nach Bedarf regulieren, nicht dauerhaft nass
• Vermeidung übermäßiger organischer Auflagen (Mulch, Kompost) auf der Oberfläche

Biologische Maßnahmen

• Meist kein Eingriff nötig – sind Teil eines gesunden Bodenlebens
• Bei Massenbefall: Substratoberfläche abtrocknen lassen
• Kein Gift einsetzen – eher Klima/Gießregime anpassen

Integrierte Strategie

• Gießfrequenz reduzieren, Drainage verbessern
• Nur bei nachweislichem Wurzelschaden an jungen Sämlingen: Nematoden (Steinernema) als Ultima Ratio

Symptome

• Unregelmäßige Verdickungen (Gallen) an Feinwurzeln und Hauptwurzeln
• Welke trotz ausreichender Bewässerung
• Chlorosen und ungleichmäßiges Wachstum im Bestand
• Wurzelsystem braun, knotig, reduzierte Seitenwurzelbildung

Monitoring

• Wurzelkontrolle bei Umtopfen oder Verdacht (Gallen mit Lupe bestätigen)
• Bodenproben-Analyse bei wiederverwendeten Substraten
• Schwache Pflanzen trotz guter Düngung als Warnsignal

Prävention

• Nur frisches, steriles Substrat verwenden – gebrauchte Erde nie ohne Sterilisation wiederverwenden
• Zugekaufte Stecklinge und Jungpflanzen: Wurzeln auf Gallen kontrollieren
• Antagonistische Pilze (Paecilomyces lilacinus) präventiv einsetzen

Biologische Maßnahmen

• Nützliche Nematoden (Steinernema, Heterorhabditis) sind NICHT gegen Meloidogyne wirksam – keine Verwechslung!
• Biologische Bodenentseuchung: Kreuzblütler-Gründüngung (Biofumigation mit Senf/Ölrettich)
• Pilzpräparate mit Purpureocillium lilacinum gegen Nematoden-Eier

Integrierte Strategie

• Befallenes Substrat komplett entsorgen (nicht im Garten verwenden)
• Solarisation bei Outdoor: Folie auf nassem Boden für 4–6 Wochen
• Resistente Genetik bevorzugen bei bekanntem Nematoden-Standort
• Fruchtfolge bei wiederholtem Outdoor-Anbau: Cannabis-Freie Rotation alle 2 Zyklen

Symptome

• Rundliche Löcher (1–3 mm) im ‚Schrotschuss-Muster' auf Blättern
• Skelettfraß an Keimblattern und ersten echten Blättern kann Totalausfall verursachen
• Käfer springen bei Annäherung sofort weg (diagnostisch)
• Larven im Boden können an Wurzeln fressen (sekundär)

Monitoring

• Visuelle Kontrolle junger Pflanzen, besonders ersten 4 Wochen nach Auspflanzung
• Leimtafeln auf Bodenhöhe (gelb/weiß) zum Populationsmonitoring
• Morgens oder bei Kühle prüfen (Käfer weniger sprungaktiv)

Prävention

• Direktsaat-Keimlinge mit Vlies oder Kulturschutznetz abdecken (< 0,8 mm Maschenweite)
• Jungpflanzen indoor vorziehen und erst als kräftige Pflanzen auspflanzen
• Mulch: Feuchter Bodenmulch reduziert Käfer-Aktivität

Biologische Maßnahmen

• Neem-basierte Spritzungen (Azadirachtin) als Fraßhemmer bei starkem Befall
• Spinosad als Bio-Spritzung zugelassen in vielen EU-Ländern für Käfer
• Nützlings-Nematoden (Steinernema carpocapsae) gegen Larven im Boden

Integrierte Strategie

• Kulturschutznetze sind die effektivste Maßnahme (mechanische Barriere)
• Trockenstress vermeiden (gestresste Pflanzen werden stärker befallen)
• Fangpflanzen (Senf) am Feldrand können Käfer ablenken
• Kräftige Pflanzen tolerieren 20–30 % Fraß ohne signifikanten Ertragsverlust

Symptome

• Große, unregelmäßige Fraßlöcher an Blatträndern und -flächen
• Keimlinge und junge Blätter über Nacht komplett abgefressen
• Silbrig-glänzende Schleimspuren auf Blättern, Substrat und Töpfen
• Kotkrümel (dunkel, kegelförmig) nahe Fraßstellen

Monitoring

• Abendliche/nächtliche Kontrolle mit Taschenlampe (Hauptaktivität 22–04 Uhr)
• Bierfallen: Becher bodenbündig eingraben (Monitoring, nicht Bekämpfung)
• Schleimspuren morgens auf Substrat und Pflanze prüfen

Prävention

• Schneckenzaun um Anbaufläche (Kupferband oder Spezialzaun)
• Substratoberfläche trocken halten, kein Mulch direkt am Stängel
• Umfeld aufräumen: Verstecke (Bretter, Steine, Laub) entfernen
• Pflanzen in erhöhte Gefäße oder auf Kupferfolie-Untersetzer stellen

Biologische Maßnahmen

• Eisen-III-Phosphat-Schneckenkorn (biologisch abbaubar, unbedenklich für Igel/Vögel)
• Nematoden Phasmarhabditis hermaphrodita als Gießmittel bei > 5 °C Bodentemp.
• Mechanisches Absammeln abends (konsequent, über 2–3 Wochen)

Integrierte Strategie

• Kupferband um Töpfe/Hochbeete (Kupfer = Kontaktbarriere für Schnecken)
• Förderung natürlicher Fressfeinde: Igel, Laufkäfer, Blindschleichen, Enten
• Kombination aus Barrieren + Schneckenkorn + Absammeln für optimale Wirkung
• Kein Metaldehyd verwenden (giftig für Haustiere und Nützlinge)

Symptome

• Kleine, knotenartige Wucherungen (Gallen) an Blättern, Stielen oder Triebspitzen
• Verdrehte oder eingerollte Blattbereiche mit orangenen Larven im Inneren
• Lokale Wachstumsdepression, verkrüppelte Triebspitzen

Monitoring

• Blätter und Triebe auf ungewöhnliche Verdickungen/Verformungen prüfen
• Gallen vorsichtig öffnen → orange/rote Larven bestätigen Gallmücken
• Gelbtafeln gegen adulte Mücken

Prävention

• Gute Belüftung des Bestands
• Befallene Pflanzenteile frühzeitig entfernen und entsorgen
• Unkrautmanagement am Feldrand (Alternativwirte reduzieren)

Biologische Maßnahmen

• Befallene Triebe/Blätter abschneiden und vernichten (Larven in Gallen)
• Nützlinge: Diverse Gallmücken-Parasitoide (Platygaster, Torymus spp.)
• Neem-basierte Mittel gegen adulte Mücken zur Eiablage-Hemmung

Integrierte Strategie

• Mechanische Entfernung befallener Pflanzenteile ist effektivste Maßnahme
• Bei schwerem Befall: Bestand ausdünnen für bessere Luftzirkulation
• Nachkontrolle 2–3 Wochen nach Entfernung auf Neubefall